¿Qué tecnologías usan los neurocientíficos para la investigación?

Todas las tecnologias?

La neurociencia es un esfuerzo muy intensivo en tecnología. Esto se debe a que el cerebro contiene miles de millones de neuronas que envían un billón de señales por segundo en paralelo a través de complejos circuitos de retroalimentación de varios niveles. Descubrir lo que está sucediendo requiere escuchar tantas de estas pequeñas señales de nivel de celda como sea posible e intentar decodificarlas.

Estas son algunas de las tecnologías que se utilizan, organizadas de alto nivel a bajo nivel.

Nivel alto:
IRM : un tipo de exploración cerebral que puede medir la activación del tejido cerebral (IRMf).
PET : otro tipo de escáner cerebral que utiliza glucosa inyectada radiomarcada
EEG : más de 64 electrodos en el cuero cabelludo que detectan “ondas cerebrales”.
MEG – un análisis de señal magnética interior
DTI : utiliza resonancia magnética para reconstruir las vías neuronales anatómicas
TMS : envía pulsos magnéticos al cerebro

Nivel medio:
ECoG : registra las señales de EEG desde la superficie del cerebro. requiere abrir el cráneo.
LFP : registra señales similares a EEG desde el interior del tejido cerebral

Nivel bajo:
electrodos implantados, grabación de una sola unidad : registros de neuronas individuales
grabación de unidades múltiples : graba de 10 a 200 neuronas simultáneamente
grabación con parche de sujeción : graba con precisión de una neurona usando pipetas de vidrio microscópico
Grabación de cortes : grabación de tejido cerebral vivo bajo un microscopio
microscopios : los microscopios de biología modernos cuestan hasta $ 200,000 cada uno, ocupan un escritorio completo y pueden tomar fotografías digitales de alta resolución en varios colores.
Imagen de 2 fotones : utiliza un colorante fluorescente para obtener imágenes de células individuales en tejido vivo

Genético:
imágenes de calcio : modificaciones genéticas que hacen que los picos neurales emitan fotones
optogenética – receptores sintéticos genéticamente modificados controlables por luz láser
virus : modifican genéticamente las neuronas; también se puede usar para rastrear vías neurales
ratones inactivados: ratones genéticamente modificados que carecen de un gen específico en estudio

Electrónica:
Todas estas técnicas requieren amplificadores súper sensibles (la señal de una sola neurona se mide en millonésimas de voltio). Convertidores A-D de alta velocidad para digitalizar la señal y terabytes de espacio en el disco duro. Éstos incluyen:
Amplificador multicanal : amplifique las señales de muchos electrodos
generador de señal : envíe señales de prueba a las neuronas
Convertidores A-D y dispositivos de captura de datos.

Aparato experimental:
La correlación de la entrada sensorial con las señales neuronales de registro requiere tecnologías elaboradas para controlar los experimentos. Esto incluye la entrega de información visual cronometrada a los ojos, aplicaciones visuales interactivas utilizadas por sujetos humanos y animales, generadores de sonido, salas de aislamiento de sonido, dispositivos de seguimiento ocular, aparatos estabilizadores de imagen, palancas y puertas operadas mecánicamente para laberintos de ratas, etc.

Software:
Analizar todos estos datos es extraordinariamente complejo. Se utilizan muchas herramientas de software, todas desarrolladas por investigadores y compartidas dentro de la comunidad de investigación. Por ejemplo:
Análisis de potencial relacionado con eventos de EEG (ERP)
Reconstrucción de imagen 3D fMRI
Reconstrucción y visualización de mapeo fMRI a superficie cortical
software de clasificación de picos para convertir señales grabadas en eventos neuronales
MATLAB : un “banco de trabajo” matemático y estadístico de matriz con cientos de módulos de gráficos y análisis de datos estadísticos
simuladores de modelos neuronales : para estudiar los efectos de los modelos neuronales hopotéticos

¡Entonces hay un comienzo!

Relacionado:
¿Cuáles son todas las diferentes medidas de actividad neuronal, en términos de sus unidades físicas?

Lo principal que hago en mi laboratorio es la grabación in vivo (esto generalmente se hace con animales, excepto en algunos casos únicos, como cuando la estimulación cerebral profunda se produce en humanos [1]). También uso Spike 2 para analizar las ondas cerebrales recogidas a través de la grabación in vivo.

La grabación in vivo significa que cortas un pequeño agujero en el cráneo sobre el área del cerebro que te interesa y luego bajas los electrodos de grabación al cerebro.

Para colocar los electrodos, utiliza un dispositivo llamado estereotáxico que
mantiene al animal anestesista inmóvil y permite precisos
mediciones.

Este es un esterotaxic utilizado para ratas.

Una vez en la estereotaxia, las mediciones se pueden tomar desde dos lugares dependiendo de cuál esté más cerca del área cerebral prevista. Estas dos áreas se llaman
Bregma y Lambda, que son puntos de intersección de suturas en la parte superior de
la calavera. En la literatura se informa que, por ejemplo, el registro se realizó -1.5 mm anterior (hacia el frente del cráneo), 0.5 mm lateral (lejos del centro del cráneo) bregma.


Una vez que los electrodos bajan al cerebro, la señal pasa a través de una serie de amplificadores y filtros (para filtrar el ruido, como la banda de 60 Hz más
electrónica emitida) a una computadora. Hay varios programas que
Se puede utilizar para capturar y analizar las señales cerebrales. Yo uso Spike 2
( http://www.ced.co.uk/pru.shtml ), otro programa común es Plexon
( http://www.plexon.com/plexon_pro …).

Arriba hay un ejemplo de cómo se ve una grabación cerebral. Este ejemplo es de
grabaciones simultáneas de la corteza del barril derecho e izquierdo. los
la parte inferior (eje x) es el tiempo y el eje izquierdo tiene cuatro canales, los dos superiores
de un electrodo en la corteza del barril izquierdo y los dos inferiores de un
electrodo en la corteza del barril derecho. Cada señal de un electrodo es
se filtraron de dos maneras diferentes para ver las neuronas disparando (filtros en
250-5000 Hz) y potencial de campo local (LFP) (filtrado de 0.1 a 100
Hz) [2]. El potencial de campo local refleja el voltaje en el local
espacio extracelular

Los dos períodos de bloques que puede ver en la imagen muestran la respuesta a
estimulación de la almohadilla de la rata (que se proyecta hacia el barril
corteza).

En una inspección más cercana (imagen a continuación) puede ver el estímulo y el resultado
potencial de acción que indica que una neurona está disparando en respuesta a la
estímulo. Puedes ver la neurona respondiendo al estímulo en los canales 4
y 8 y la respuesta de LFP en los canales 5 y 9.


Un paso más que puede tomar para observar una neurona en aumento es tomar un estímulo
Activar el promedio de forma de onda (STWA). Esto significa que promedia el
respuesta de las neuronas al estímulo durante todo el período que está siendo
estimulado En este caso hay 100 estímulos separados por 330 ms.
(Estímulos de 3Hz por 33.3 s). Esto resulta en:


Esto es, en cierto sentido, una imagen de una respuesta neuronal (una supuesta piramidal
(exitatorio) de células en función de la duración del potencial de acción.)

[1] http://en.wikipedia.org/wiki/Dee
[2] http://en.wikipedia.org/wiki/Loc

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